- Значение слова «ингибировать»
- ингиби́ровать
- Делаем Карту слов лучше вместе
- Синонимы к слову «ингибировать»
- Предложения со словом «ингибировать»
- Понятия, связанные со словом «ингибировать»
- Отправить комментарий
- Дополнительно
- Предложения со словом «ингибировать»
- Анализ современных методов и средств экспрессной индикации растительных токсинов, ингибирующих синтез белка
Значение слова «ингибировать»
ингиби́ровать
1. хим. снижать скорость химических реакций или подавлять их ◆ На примере высокотемпературного окисления сложноэфирного масла видно, что, например, алкилсульфонаты катализируют реакцию окисления, алкилсалицилаты слабо ингибируют этот процесс, а соли алкилфосфорной кислоты заметно тормозят окисление эфира. Олег Паренаго и др., «Наноразмерные структуры в углеводородных смазочных материалах», 2003 г. // «Российский химический журнал» (цитата из НКРЯ)
Делаем Карту слов лучше вместе
Привет! Меня зовут Лампобот, я компьютерная программа, которая помогает делать Карту слов. Я отлично умею считать, но пока плохо понимаю, как устроен ваш мир. Помоги мне разобраться!
Спасибо! Я стал чуточку лучше понимать мир эмоций.
Вопрос: ханство — это что-то нейтральное, положительное или отрицательное?
Синонимы к слову «ингибировать»
Предложения со словом «ингибировать»
- Стоит отметить, что мемантин способен ингибировать и нейротрансмиссию, играющую ключевую роль в формировании памяти, и таким образом нарушить когнитивную функцию.
Понятия, связанные со словом «ингибировать»
Ферментативный ингибитор — вещество, замедляющее протекание ферментативной реакции. Различают обратимые и необратимые ингибиторы (см. ниже).
Отправить комментарий
Дополнительно
Предложения со словом «ингибировать»
Стоит отметить, что мемантин способен ингибировать и нейротрансмиссию, играющую ключевую роль в формировании памяти, и таким образом нарушить когнитивную функцию.
Действие лектинов, не являющихся специфичными для той или иной группы крови, может быть косвенным: такие лектины способны ингибировать действие пищеварительных гормонов либо способствовать выработке токсинов.
Иное дело, что личности (атомы добавок в исходное сырьё) способны как катализировать, так и ингибировать процессы развития общества, иногда доводя результат до крайних пределов (что в процессе кристаллизации технологических расплавов выражается в получении неоднородного шлама, либо полного сгорания исходного сырья).
Источник
Анализ современных методов и средств экспрессной индикации растительных токсинов, ингибирующих синтез белка
Митева О. А., Быкова К. А., Мясникова И. А., Чепур С. В., Аль-Шехадат Р. И.
Государственный научно-исследовательский испытательный институт военной медицины Министерства обороны Российской Федерации
Резюме
В статье приведeн обзор современных подходов, методов и средств экспресс-индикации одной из наиболее значимых групп токсинов, ингибирующих синтез белка, определяющий перспективу разработки и внедрения на рынок как отечественных тест-систем, так и платформ автоматического анализа для выявления этих токсинов в объектах окружающей среды и биологическом материале.
Ключевые слова
биобезопасность, рибосом-инактивирующие белки, лектины, детекция и идентификация.
(статья в формате PDF. Для просмотра необходим Adobe Acrobat Reader)
открыть статью в новом окне
1. Измерение концентраций вредных веществ в воздухе рабочей зоны: Сб. метод, указаний МУК 4.1.100-96-МУК 4.1.197-96. // Официальное издание, М.: Информационно-издательский центр Минздрава России. — 1998. — Вып. 29. — 429 с.
2. Спицын А. Н., Осина Н. А., Германчук В. Г., Уткин Д. В., Шарова И. Н., Куклев В. Е., Портенко С. А. Неспецифическая индикация микроорганизмов в объектах окружающей среды // Проблемы особо опасных инфекций. — 2018. — вып. 1. — С. 66-70.
3. Челнокова О.B. Конформационные изменения растительных токсинов в ходе внутриклеточного транспорта // Дис. канд. биол. наук. — М., 2004. — 122 с.
4. Armstrong S., Yates S. P., Merrill A. R. Insight into the Catalytic Mechanism of Pseudomonas aeruginosa Exotoxin A studies of toxin interaction with eukaryotic elongation factor-2 // Journal of Biological Chemistry. — 2002. — Т. 277. — 48. — Р. 46669-46675.
5. Bozza W. P. et al. Ricin detection: Tracking active toxin // Biotechnology advances. — 2015. — Т. 33. — 1. — Р. 117-123.
6. Cloney L. P. et al. RAMP?: High Accuracy from Immunochromatographic Assays by the Use of Internal Control Ratios // Clinical Chemistry. — 2003. — Т. 49. — 10. — Р. 1775-1777.
7. Darby S. M., Miller M. L., Allen R. O. Forensic determination of ricin and the alkaloid marker ricinine from castor bean extracts // Journal of Forensic Science. — 2001. — Т. 46. — 5. — Р. 1033-1042.
8. Delehanty J. B., Ligler F. S. A microarray immunoassay for simultaneous detection of proteins and bacteria // Analytical Chemistry. — 2002. — Т. 74. — 21. — Р. 5681-5687.
9. Fulton R. E., Thompson H. G. Fluorogenic Hand‐Held Immunoassay for the Identification of Ricin: Rapid Analyte Measurement Platform // Journal of immunoassay & immunochemistry. — 2007. — Т. 28. — 3. — Р. 227-241.
10. Gao S. et al. Colloidal Gold-Based Immunochromatographic Test Strip for Rapid Detection of Abrin in Food Samples // Journal of food protection. — 2012. — Т. 75. — 1. — Р. 112-117.
11. Garber E. A. E. Toxicity and detection of ricin and abrin in beverages // Journal of food protection. — 2008. — Т. 71. — 9. — Р. 1875-1883.
12. Garber E. A. E., Venkateswaran K. V., OBrien T. W. Simultaneous multiplex detection and confirmation of the proteinaceous toxins abrin, ricin, botulinum toxins, and Staphylococcus enterotoxins A, B, and C in food // Journal of agricultural and food chemistry. — 2010. — Т. 58. — 11. — Р. 6600-6607.
13. Garber E. A. E., Walker J. L., O’BRIEN T. W. Detection of abrin in food using enzyme-linked immunosorbent assay and electrochemiluminescence technologies // Journal of food protection. — 2008. — Т. 71. — 9. — Р. 1868-1874.
14. Garber E.A.E., Thole J. Application of Microwave Irradiation and Heat to Improve Gliadin Detection and Ricin ELISA Throughput with Food Samples // Toxins. 2015. — Vol. 7. — 6. — P. 2135-2144.
15. Girbés T. et al. Description, distribution, activity and phylogenetic relationship of ribosome-inactivating proteins in plants, fungi and bacteria // Mini reviews in medicinal chemistry. — 2004. — Т. 4. — 5. — Р. 461-476.
16. Griffiths G. D., Newman H. V., Gee D. J. Immunocytochemical detection of ricin. II. Further studies using the immunoperoxidase method //The Histochemical Journal. — 1986. — Т. 18. — 4. — Р. 189-195.
17. He X. et al. Detection of abrin holotoxin using novel monoclonal antibodies //Toxins. — 2017. — Т. 9. — 12. — Р. 386.
18. Johnson R. C. et al. Quantification of ricinine in rat and human urine: a biomarker for ricin exposure //Journal of analytical toxicology. — 2005. — Т. 29. — 3. — Р. 149-155.
19. Leith A. G., Griffiths G. D., Green M. A. Quantification of ricin toxin using a highly sensitive avidin/biotin enzyme-linked immunosorbent assay //Journal of the Forensic Science Society. — 1988. — Т. 28. — 4. — Р. 227-236.
20. Pauly D. et al. Monitoring of laying capacity, immunoglobulin Y concentration, and antibody titer development in chickens immunized with ricin and botulinum toxins over a two-year period // Poult. Sci. — 2009. — Vol. 88. — 2. — P. 281-290.
21. Pauly D. et al. Simultaneous quantification of five bacterial and plant toxins from complex matrices using a multiplexed fluorescent magnetic suspension assay // The Analyst. — 2009. — Vol. 134. — 10. — P. 2028-2039.
22. Poli M. A. et al. Detection of ricin by colorimetric and chemiluminescence ELISA // Toxicon. — 1994. — Т. 32. — 11. — Р. 1371-1377.
23. Ramage J. G. et al. Comprehensive laboratory evaluation of a specific lateral flow assay for the presumptive identification of abrin in suspicious white powders and environmental samples // Biosecurity and bioterrorism: biodefense strategy, practice, and science. — 2014. — Т. 12. — 1. — Р. 49-62.
24. Shyu H. F. et al. Monoclonal antibody-based enzyme immunoassay for detection of ricin // Hybridoma and hybridomics. — 2002. — Т. 21. — 1. — Р. 69-73.
25. Simon S. et al. Recommended Immunological Assays to Screen for Ricin-Containing Samples // Toxins. — 2015. — Vol. 7. — 12. — P. 4967-4986.
26. Simonova M. A. et al. Development of xMAP assay for detection of six protein toxins // Analytical chemistry. — 2012. — Т. 84. — 15. — Р. 6326-6330.
27. Validation of an Antigen-Capture Enzyme-Linked Immunosorbent Assay (ELISA) for the Detection and Quantification of Ricin Toxin // PloS One. — 2011. — Vol. 6. — 5. — P. 201-266.
28. Wadkins R. M. et al. Detection of multiple toxic agents using a planar array immunosensor // Biosensors and Bioelectronics. — 1998. — Т. 13. — 3-4. — Р. 407-415.
29. Weingart O. G. et al. A bioanalytical platform for simultaneous detection and quantification of biological toxins // Sensors. — 2012. — Т. 12. — 2. — Р. 2324-2339.
30. Zhou Y. et al. An enhanced ELISA based on modified colloidal gold nanoparticles for the detection of Pb (II) // Biosensors and Bioelectronics. — 2011. — Т. 26. — 8. — Р. 3700-3704.
1. Measurement of concentrations of harmful substances in the air of the working area: collection of guidelines MUK 4.1.100-96-MUK 4.1.197-96. // Official publication, M .: Information and Publishing Center of the Ministry of Health of Russia.- 1998. — N 29. — 429 p. method of guidance. [In Russian].
2. Spitsyn A. N., Osina N.A., Germanchuk V. G., Utkin D. V., Sharova I. N., Kuklev V. E., Portenko S. A.. Nonspecific indication of microorganisms in environmental objects // Problemy Osobo Opasnykh Infektsii. — 2018. — N 1. — P. 66-70. [In Russian].
3. Chelnokova O.B. Conformational changes in plant toxins during intracellular transport // Dis. kand. biol. nauk. — M., 2004. — 122 p. [In Russian].
4. Armstrong S., Yates S. P., Merrill A. R. Insight into the Catalytic Mechanism of Pseudomonas aeruginosa Exotoxin A studies of toxin interaction with eukaryotic elongation factor-2 // Journal of Biological Chemistry. — 2002. — Т. 277. — 48. — Р. 46669-46675.
5. Bozza W. P. et al. Ricin detection: Tracking active toxin // Biotechnology advances. — 2015. — Т. 33. — 1. — Р. 117-123.
6. Cloney L. P. et al. RAMP: High Accuracy from Immunochromatographic Assays by the Use of Internal Control Ratios // Clinical Chemistry. — 2003. — Т. 49. — 10. — Р. 1775-1777.
7. Darby S. M., Miller M. L., Allen R. O. Forensic determination of ricin and the alkaloid marker ricinine from castor bean extracts // Journal of Forensic Science. — 2001. — Т. 46. — 5. — Р. 1033-1042.
8. Delehanty J. B., Ligler F. S. A microarray immunoassay for simultaneous detection of proteins and bacteria // Analytical Chemistry. — 2002. — Т. 74. — 21. — Р. 5681-5687.
9. Fulton R. E., Thompson H. G. Fluorogenic Hand‐Held Immunoassay for the Identification of Ricin: Rapid Analyte Measurement Platform // Journal of immunoassay & immunochemistry. — 2007. — Т. 28. — 3. — Р. 227-241.
10. Gao S. et al. Colloidal Gold-Based Immunochromatographic Test Strip for Rapid Detection of Abrin in Food Samples // Journal of food protection. — 2012. — Т. 75. — 1. — Р. 112-117.
11. Garber E. A. E. Toxicity and detection of ricin and abrin in beverages // Journal of food protection. — 2008. — Т. 71. — 9. — Р. 1875-1883.
12. Garber E. A. E., Venkateswaran K. V., OBrien T. W. Simultaneous multiplex detection and confirmation of the proteinaceous toxins abrin, ricin, botulinum toxins, and Staphylococcus enterotoxins A, B, and C in food // Journal of agricultural and food chemistry. — 2010. — Т. 58. — 11. — Р. 6600-6607.
13. Garber E. A. E., Walker J. L., O’BRIEN T. W. Detection of abrin in food using enzyme-linked immunosorbent assay and electrochemiluminescence technologies // Journal of food protection. — 2008. — Т. 71. — 9. — Р. 1868-1874.
14. Garber E.A.E., Thole J. Application of Microwave Irradiation and Heat to Improve Gliadin Detection and Ricin ELISA Throughput with Food Samples // Toxins. 2015. — Vol. 7. — 6. — P. 2135-2144.
15. Girbés T. et al. Description, distribution, activity and phylogenetic relationship of ribosome-inactivating proteins in plants, fungi and bacteria // Mini reviews in medicinal chemistry. — 2004. — Т. 4. — 5. — Р. 461-476.
16. Griffiths G. D., Newman H. V., Gee D. J. Immunocytochemical detection of ricin. II. Further studies using the immunoperoxidase method //The Histochemical Journal. — 1986. — Т. 18. — 4. — Р. 189-195.
17. He X. et al. Detection of abrin holotoxin using novel monoclonal antibodies //Toxins. — 2017. — Т. 9. — 12. — Р. 386.
18. Johnson R. C. et al. Quantification of ricinine in rat and human urine: a biomarker for ricin exposure //Journal of analytical toxicology. — 2005. — Т. 29. — 3. — Р. 149-155.
19. Leith A. G., Griffiths G. D., Green M. A. Quantification of ricin toxin using a highly sensitive avidin/biotin enzyme-linked immunosorbent assay //Journal of the Forensic Science Society. — 1988. — Т. 28. — 4. — Р. 227-236.
20. Pauly D. et al. Monitoring of laying capacity, immunoglobulin Y concentration, and antibody titer development in chickens immunized with ricin and botulinum toxins over a two-year period // Poult. Sci. — 2009. — Vol. 88. — 2. — P. 281-290.
21. Pauly D. et al. Simultaneous quantification of five bacterial and plant toxins from complex matrices using a multiplexed fluorescent magnetic suspension assay // The Analyst. — 2009. — Vol. 134. — 10. — P. 2028-2039.
22. Poli M. A. et al. Detection of ricin by colorimetric and chemiluminescence ELISA // Toxicon. — 1994. — Т. 32. — 11. — Р. 1371-1377.
23. Ramage J. G. et al. Comprehensive laboratory evaluation of a specific lateral flow assay for the presumptive identification of abrin in suspicious white powders and environmental samples // Biosecurity and bioterrorism: biodefense strategy, practice, and science. — 2014. — Т. 12. — 1. — Р. 49-62.
24. Shyu H. F. et al. Monoclonal antibody-based enzyme immunoassay for detection of ricin // Hybridoma and hybridomics. — 2002. — Т. 21. — 1. — Р. 69-73.
25. Simon S. et al. Recommended Immunological Assays to Screen for Ricin-Containing Samples // Toxins. — 2015. — Vol. 7. — 12. — P. 4967-4986.
26. Simonova M. A. et al. Development of xMAP assay for detection of six protein toxins // Analytical chemistry. — 2012. — Т. 84. — 15. — Р. 6326-6330.
27. Validation of an Antigen-Capture Enzyme-Linked Immunosorbent Assay (ELISA) for the Detection and Quantification of Ricin Toxin // PloS One. — 2011. — Vol. 6. — 5. — P. 201-266.
28. Wadkins R. M. et al. Detection of multiple toxic agents using a planar array immunosensor // Biosensors and Bioelectronics. — 1998. — Т. 13. — 3-4. — Р. 407-415
29. Weingart O. G. et al. A bioanalytical platform for simultaneous detection and quantification of biological toxins // Sensors. — 2012. — Т. 12. — 2. — Р. 2324-2339.
30. Zhou Y. et al. An enhanced ELISA based on modified colloidal gold nanoparticles for the detection of Pb (II) // Biosensors and Bioelectronics. — 2011. — Т. 26. — 8. — Р. 3700-3704.
Источник